1.2.6.2  海藻酸钠+氯化钙包埋法    称取海藻酸钠(SA) 0.2 g,放入烧杯,加入20 ml蒸馏水,沸水浴至完全溶解,后冷却至30℃左右,加入定量菌悬液和生物炭,混合均匀后,用针管将混合液滴至CaCl2溶液,形成固定化微球,4℃下交联4 h。然后用生理盐水冲洗固定化微球2-3次,置于30℃恒温鼓风干燥箱中烘干备用。之后,分别对海藻酸钠浓度(10 g/L、20 g/L、30 g/L、40 g/L、50 g/L、CK)、菌体含量(0、0.5%、1%、1.5%、2%、2.5%、CK)、生物炭含量(0.5%、1%、1.5%、2%、2.5%、3%、CK)和CaCl2溶液浓度(10 g/L、20 g/L、30 g/L、40 g/L、50 g/L、CK)等影响因素进行条件优化。
1.2.6.3  壳聚糖微球包埋法    称量2.5 g壳聚糖溶于100 ml 1%的醋酸溶液中,室温静置过夜至完全溶解。将菌悬液和壳聚糖溶液混匀,用注射器将两者混合液逐滴加入到固化液0.25 mol/L的NaOH溶液中,使之成球,4℃交联4 h。用去离子水冲洗固定化微球表面2-3次,放置于30℃恒温鼓风干燥箱中烘干备用。
1.2.7  固定化微球保存    按1.2.6.2方法制备的海藻酸钠微球保存,现有4种方法,① 湿法保存(Wet):放置于生理盐水环境中浸泡,4℃保存;② 真空保存(Vacuum):放置于30℃恒温鼓风干燥箱中烘干后真空状态保存;③ 干燥保存(Dry):放置于30℃恒温鼓风干燥箱中干燥,然后置于4℃环境中低温保存;④ 冷冻保存(Freeze-dry):置于-20℃冷冻保存。放置1周,检测不同保存方法下固定化微球的乙草胺降解率以及重复利用率。
1.2.8  乙草胺水解酶的酶活测定    摇瓶接种后,培养12 h,加30 mg/kg乙草胺水溶液,诱导菌体产生乙草胺水解酶。继续培养12 h后,取样,12000 rpm、4℃离心10 min。取上清液用PBS缓冲液稀释至3 ml,加入30 mg/kg乙草胺溶液(甲醇溶),30℃水浴2 h,迅速取出,用等体积二氯甲烷萃取,终止反应。去除水相,保留有机相,加足量无水Na2SO4去除剩余水分。乙草胺用扫描型紫外-可见光分光光度仪200 nm-350 nm扫描时可在232 nm左右处出现最高峰,故可制作乙草胺含量的标准曲线,以此测量反应剩余的乙草胺含量,计算出酶活。
酶活计算公式:酶活(U/L)={[(乙草胺降解量×酶促反应体系体积)&pide;酶促反应时间(min)]&pide;(1 μmol×乙草胺的相对分子质量&pide;1 min)}&pide;添加酶液的体积(L)。
1.2.9  乙草胺含量标准曲线的制作    取7支干净的25 ml刻度试管,依次编号,分别添加标准乙草胺溶液配制的浓度分别为0、10、20、25、40、50、100 mg/kg的溶液。在232 nm波长下测定吸光度值。以乙草胺含量为横坐标,232 nm波长下吸光度值为纵坐标,经空白校正后绘制出标准曲线。
1.2.10  乙草胺降解效果检测    将固定化微球或菌悬液或生物炭悬液加到添加30 mg/kg乙草胺的100 ml基础盐培养基MM中,于30℃、180 rpm恒温摇床中振荡培养,并定时取样。采取紫外扫描法快捷定性测定降解液样品中的降解乙草胺残余含量。
紫外扫描法[11]:取样,加入等体积的二氯甲烷萃取,涡旋仪充分震荡2 min,然后静置至有机相和水相完全分层,然后吸取上层水相,保留有机相;上层水相再用等体积二氯甲烷萃取,两次得到的有机相经无水Na2SO4去除残留水分,于紫外-可见光分光光度仪上在波长200-350 nm范围内扫描;通过观察232 nm处特征吸收峰峰值的高低来判断样品中剩余乙草胺含量的高低,从而计算乙草胺降解率。
乙草胺降解率:ŋ=1-(乙草胺残余量/乙草胺初始量)×100%
1.2.11  乙草胺最大降解量测定    将按1.2.7.2方法制备的海藻酸钠微球分别加到50 mg/kg、100 mg/kg、200 mg/kg、300 mg/kg乙草胺水溶液中,放置于30℃、180 rpm恒温摇床中振荡培养,并定时取样。采取紫外扫描法快捷定性测定降解液样品中的降解乙草胺残余含量。
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