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盐胁迫下大岛野路菊形态及组织结构的变化(2)

时间:2018-09-09 21:40来源:毕业论文
1 材料与方法 1.1 材料 根据管志勇等(2010b)和施晓梦等(2014)对菊属植物耐盐性的研究结果,本文选择耐盐的大岛野路菊进行研究。材料由南京农业大



1  材料与方法
1.1  材料
根据管志勇等(2010b)和施晓梦等(2014)对菊属植物耐盐性的研究结果,本文选择耐盐的大岛野路菊进行研究。材料由南京农业大学“中国菊花种质资源保存中心”提供。
1.2  材料培养方法    
试验于2015到2017年进行,共重复实验3次。采集生长良好的大岛野路菊嫩稍扦插于基质(蛭石:珍珠岩:营养土=1:1:1)中。插穗生根并展开6-7片叶后,挑选生长均匀一致的植株移栽并水培于塑料周转箱(体积20 L)内,用Hoagland营养液培养,气泵24 h•d-1 通气。缓苗生长7 d后,待用。试验一将生根苗分别置于0(CK),80,120,200mM NaCl(S)的Hoagland营养液中培养,每处理25株。试验二将生根苗分别置于0(CK),和120mM NaCl(S)的Hoagland营养液中,每处理25株。
1.3  整株形态变化的记录   
在生长过程进行观察拍照,拍照时间点为0 d, 5 d, 10 d, 20 d。并在处理前和盐胁迫30 d时,在各组中各随机选取15株,分别对株高,鲜重,干重,叶片数量,分枝长度,分枝叶片数量,枯叶数,茎粗等进行测量。其数据用SPSS 20统计软件进行单因素方差分析,对平均数进行独立样本T-检验(P≤0.05)。
1.4  叶片大小的测量
采用了描叶称重法确定其面积[7],从顶端数第一、第三及从基部数第五片叶片在确保不造成损伤的情况下在A4纸上进行描叶,然后剪下称重,依据重量比就是面积比,以此换算出叶片面积。
1.5石蜡切片制作
分别在0 d, 5 d, 10 d, 和 20 d取胁迫和对照植株的从顶端数第四片展开叶,取避开叶脉的叶上同一位置取样,将其切成0.3×0.3 cm的小块,用FAA固定液固定。随后样品用梯度浓度的酒精脱水,再用梯度浓度的二甲苯替换出酒精,然后包埋于石蜡中。用切片机将包埋好的叶片横切成25 μm的薄片,并用0.1%的甲苯胺蓝(w/v)染色。切片,并用Smarscape 2002软件进行拍照以及叶片厚度的测量[8]。每切片观察10个视野,每个品种观察4-5个切片。并取盐胁迫30 d的胁迫和对照植株的从顶端数第四片展开叶的叶柄中段,以及侧枝的顶端数第三节和主枝的顶端做石蜡切片,试验方法同上。
1.6  叶片气孔、表皮细胞以及栅栏组织细胞的观察
分别在0 d, 5 d, 10 d, 和 20 d取胁迫和对照植株的叶片,将其泡入漂白剂(50g/L次氯酸钠和13g/L氢氧化钠)中,浸泡至透明后,便可用Olympus BX41显微镜观察气孔、表皮细胞以及栅栏组织细胞并拍照[9]。叶片取样位置及计数方法同上。
1.7 扫描电镜观察
在胁迫30 d后,分别取对照与胁迫植株顶端以下的第四片完全展开叶,用刀片在其相同的部位(蜡质观察上表皮,表皮毛分别避开叶脉和不避开叶脉观察下表皮,腺体在去除表皮毛后观察上、下表皮)切取为约为0.3×0.3 cm的小块,根据扫描电镜常规的样品制备方法[10],用2.5%戊二醛(0.1 M磷酸缓冲液PH 7.2)进行固定、抽气,再经乙醇梯度脱水,临界点干燥(蜡质观察为将样品保存于液氮中,随后冷冻干燥以避免乙醇溶解蜡质),离子镀膜,然后在扫描电子显微镜下观察、拍照。每个切片观察10个视野,每个实验观察4-5个切片。
1.8 数据分析
试验数据使用SPSS 20统计软件进行单因素方差分析(P<0.05),采用Microsoft Excel 2007软件绘图。
2  结果与分析
2.1  大岛野路菊在不同盐浓度下的生长情况
图1为大岛野路菊植株在不同盐浓度下生长30 d的生长状况,图中可以看出,与对照相比,盐胁迫抑制了大岛野路菊的生长,且随着盐处理浓度的提高,影响越来越大。植株还出现基部叶片枯萎脱落,生长部位叶片表现出明显的增厚、增大现象。 盐胁迫下大岛野路菊形态及组织结构的变化(2):http://www.youerw.com/shengwu/lunwen_22779.html
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