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3）用分光光度计，在波长645 nm、663 nm处分别测定上述提取液的吸光值，以混合液为空白对照。

4）计算：

叶绿素含量（单位：mg/g。FW）

Ca=12。7D663-2。59D645 Cb=22。9D645-4。67D663

含量（单位：mg/g。FW）=（C*V）/（1000*W）=C*0。4

1。3。2。 酶活力

对经过逆境处理后的水稻中SOD、POD、GSH-PX、CAT酶的活力测量，采用以下方法：

    首先提取粗酶液：0。3 g鲜样+8 ml 0。05 M pH7。8的PBS提取液，研磨匀浆，1000 r/min离心5 min，上清液即为酶粗体液。

（一） SOD测量方法

1）NBT反应液：1 L PBS（同提取液）+1。93 g甲硫氨酸（待完全溶解后再溶解其他物质）+0。0458 g NBT+0。0291 g EDTA+0。00046 g核黄素（测定前再加入）

2） 3 ml NBT反应液于小烧杯中+100 μl酶粗提液，于4000 Lux下光照15 min，以3 ml NBT反应液+100 μl提取缓冲液为CK。OD 560测定。

3）计算：SOD活性（u/g）=[(OD对照-OD测试)/ OD对照]×(100/50)×稀释倍数/鲜重

（二） POD测量方法

    100 μl 酶粗提液+2700 μl PBS（25 mM，pH 7。0，+2 mM EDTA）+100 μl愈创木酚（1。5%，1。5 ml定容于100ml）+100 μl H202（300 mM，1。53 ml 30%的H202定容于50 ml）；摇匀，迅速转入比色皿，A 470动力学方法测定，取15-25 s曲线斜率作为其活性。

（三）CAT测量方法

100 μl酶粗提液+2800 μl PBS（25 mM，pH7。0，+2 mM EDTA）+100 μl H2O2（300 mM，1。3 ml 30%的H2O2定容于50 ml）；摇匀，迅速转入比色皿，A240动力学方法测定，取15-25 s曲线斜率作为其活性。

1。4。 数据处理文献综述

利用SPSS软件，EXCAL软件将所得数据进行处理，将所得结果表格化以及图形化。

2。 结果和分析

2。1。 叶片叶绿素含量变化

图1A显示， 在150 mM NaCl处理下，OV 14-4和OV 17-2株系的叶绿素含量随时间进程均高于日本晴，其中OV 14-4株系在盐处理24 h、48 h后叶绿素含量为292。11 mg/m2和314。89 mg/m2，分别比同期的日本晴叶绿素含量高18。42%，和18。03%，统计分析呈差异极显著（P<0。01）。恢复正常营养液培养48 h后，日本晴叶绿素含量略有回升，但是两个过表达株系的叶绿素含量仍分别高出日本晴叶绿素含量的8。13%和8。62%，统计学分析呈差异显著（P<0。05），说明转OsSTSL2基因的过表达株系经过盐胁迫后可保持较高的叶片叶绿素含量。两个RNAi株系在盐处理条件下，叶片叶绿素含量变化不显著，与日本晴相比，叶片叶绿素含量均处于较低水平，在恢复正常营养液培育48 h后，仍未见叶片叶绿素含量的显著回升。