湖羊TGFBR2基因遗传多样性初步分析(3)_毕业论文

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湖羊TGFBR2基因遗传多样性初步分析(3)

转化生长因子β(transforming growth factor beta,TGF-β)属于TGF-β超家族中的一员,参与调节细胞生长和分化。除TGF-β外,这一家族还包括以下几个亚家族:缪勒氏管抑制质、骨形成蛋白、活化素和抑制素,在每个家族中都分别包含结构相似但功能不同的几个成员[1-3]。TGF-β超家族成员发挥生物学效应,通常是以作为配体的形式,而TGF-β的受体则存在许多细胞表面,本实验所要探究实验的转化生长因子β-Ⅱ型受体(transforming growth factor beta reception-Ⅱ,TGFBR2)就是属于TGF-β家族的一个重要受体。

人体中TGFBR2的结构已研究清楚,它的本质是包括以下四部分(信号肽、胞外区、跨膜区和胞内区)的跨膜蛋白,由567个氨基酸组合而成。研究表明,TGFBR2基因在大多数的组织和细胞中均有表达[4-9]。以往对于转化生长因子β受体生物学功能的研究主要在三方面:妊娠过程中的胚胎发育、参与组织修复和炎症等[4,8-12],但近年来还发现了其在促进细胞生长、分化,调节免疫功能等方面的作用。在人体上,TGFBR2基因的缺失会导致发育受阻以及畸形[13]。在骨骼发育方面,Anna[14]等人研究发现通过在小鼠的四肢敲除TGFBR2基因,由于TGF -β传导信号中断,致使小鼠的四肢指骨关节缺失。Serra[15]等进一步证明了TGFBR2基因是头盖骨发育的必须因子;在神经系统发育方面,Maurizio[16]等人研究发现TGFBR2基因可以调控神经膜细胞的增殖,降低异常凋亡的出现。此外,Schilling[17]发现TGFBR2基因更是参与了卵泡发育、胚胎植入与发育等方面。以上研究表明,TGFBR2基因在调节动物细胞的生长分化、促进卵泡发育和提高繁殖性能方面具有极其重要的作用,值得我们进一步深入研究。

目前,对于湖羊有许多研究报道,但在分子水平上对湖羊TGFBR2基因遗传多态性及其生长性状的关系的研究还没有报道。因此,基于以上TGFBR2基因的研究进展,本实验拟以具有重要经济价值的湖羊为研究对象,利用PCR-SSCP技术和DNA测序方法对该基因的多态性进行实验检测,并将发现的TGFBR2基因SNPs与相应的生长性状进行遗传效应的关联分析,从而为湖羊的选育提供参考。

2 材料与方法

2.1实验材料

2.1.1 实验动物样本来源

本实验动物为湖羊,共80只,选自徐州市大郭庄机场养羊场。在耳尖部用75%酒精棉球消毒后,剪取部分耳组织样置于70%乙醇中,立即放入冰盒带回实验室,并于-80℃保存备用。

2.1.2体尺指标的获得文献综述

参照《家畜育种学实验指导》[18]介绍的方法,当场测量实验羊只的体尺指标,包括:体高、体长、胸围、管围等。

2.2主要试剂与仪器

2.2.1主要试剂

(1)DNA提取:

DNA抽提缓冲液(STE)(0.5 mol/L EDTA、1mol/L Tris.Cl、5mol/L NaCl、10% SDS)、蛋白酶K (20 mg/kg)、饱和酚、氯仿、异戊醇、无水乙醇(-20℃)、70%乙醇(-20℃)、DEPC-超纯水;

(2)电泳

琼脂糖凝胶电泳:琼脂糖、10×TBE缓冲液(硼酸、Tris、0.5mol/L EDTA)、10×Loading Buffer、MarkerⅢ、核酸染料(EB);

聚丙烯酰胺凝胶电泳:30%丙烯酰胺、10×TBE缓冲液、ddH2O、四甲基乙二胺(TEMED)、10%过硫酸铵(APS)、硝酸银(AgNO3)、氢氧化钠(NaOH)、甲醛;

(3)PCR-SSCP:

Taq DNA聚合酶、dNTP、10×PCR Buffer(含Mg2+)、变性缓冲液(甲酰胺、0.5mol/L EDTA、0.025% 溴酚蓝、0.025% 二甲苯青、甘油);

2.2.2仪器设备

表2-1 仪器与设备

Table 2-1  Apparatus and equipment

 仪器名称 (责任编辑:qin)