里氏木霉中β-葡萄糖苷酶cel1a克隆(4)
时间:2021-10-23 09:44 来源:毕业论文 作者:毕业论文 点击:次
2。2。1 目的基因(cel1a)和启动子(Pact)的扩增 1、里氏木霉的培养 本实验将在PDA培养基上培养里氏木霉,培养2天后,收集里氏木霉菌丝放于冷冻箱中备用。 2、里氏木霉基因组DNA的提取 取之前冷冻过的菌丝,加入液氮研磨成粉末状,转移至离心管中,加入2ml的CTAB提取缓冲液,65℃保温1h,间或轻摇混匀。1h后以8000 r/min的转速离心10 min。然后小心吸取离心管中上清液,加入等体积的氯仿:异戊醇溶液,抽提10min(涡旋混匀,放置10min),然后以12000 r/min的转速离心10 min。取80%的上层液体(尽量多取)加入等体积预冷的异丙醇,-20℃沉淀,30min后以10000rpm的转速离心10min,之后取沉淀,加入500µL TE溶解,再加50µL NaAc。加入氯仿-异丙醇(1:1)后,静置10min,然后以12000rpm的转速离心,取上清(重复至中间层几乎没有)。加入等体积的异丙醇,-20℃沉淀30min,以10000rpm的转速离心10min。取离心后沉淀,用70%乙醇洗2次,加入300µL TE(已加入RNase)溶解。然后把溶液放置在4℃冰箱中备用。 3、cel1a的扩增 (1) 引物设计 根据cel1a克隆的DNA片段序列,设计引物为cel1a-Act-F和cel1a-R,cel1a-Act-F的序列为ATTAATCAGTCACAATGCTGCCCAAGGACTTTCAGTGG,其中波浪线标记序列是是Pact的基因序列,下划直线标记基因是cel1a的基因序列。cel1a-R的基因序列为ATTATATATAAGCTTGCCATCATGGTGCTGCTGTTTCTG,其中波浪线标记基因是HindⅢ限制性内切酶的识别位点,引物cel1a-Act-F和cel1a-R均为赛百盛基因技术有限公司合成。文献综述 (2) DNA聚合酶为Fastpfu酶的扩增 Fastpfu酶保真性较高,虽然 Taq酶价格便宜、易出结果,但是Taq酶不具有3'→5'的外切酶活性,在扩增过程中容易导致碱基的错配,从而引起基因突变,最后会影响基因的功能。可用于进行PCR摸索条件的实验,条件确定之后再改为Fastpfu酶,既保证扩增效率,又提高了保真性,可以合成较少的特异性弱的产物;正确率较高。PCR体系(25µL)为: 19。6 µL的H2O,2。5µL 10×(Fastpfu)buffer,1µL的基因组DNA,0。5µL的cel1a-Act-F,0。5µL的cel1a-R和0。4 µL的Fastpfu酶。PCR反应程序为:先预变性,94℃时间4 min后。94℃,30s变性,52℃ ,36s退火,70℃ ,2min延伸,三步为一个循环,进行30个循环后,72℃延伸5 min。PCR产物采用1%琼脂糖凝胶电泳检测。具体电泳方法为:搭好制胶板,选择所需的孔大小的梳子,称取1g琼脂糖粉末,加入100ml 1× TAE,放入微波炉中加热溶解至透明无颗粒。稍冷却后倒入搭好的制胶板中,冷却凝固待用,切下所需孔数的凝胶,放入电泳槽中,孔在负极(黑色)端点样待样品中蓝色走到胶的2/3处时,停止电泳。取出凝胶,放入含EB的buffer中染色2min后,在紫外灯下观察跑胶结果。PCR体系多做几组,以备回收目的基因DNA所用。 (3) 琼脂糖凝胶回收cel1a的DNA(exDNA导纳凝胶回收试剂盒) 从凝胶中切下要回收的目的DNA条带,将大小在2。1kb左右的条带切下,置于1。5ml离心管中,称重加入3倍体积的Buffer DS,凝胶体积按1mg=1ml算。在上述试管中加入3µL exDNA Milk(使用时摇匀)。然后将试管摇匀,置于55℃至凝胶溶解(注:如果胶溶解后变紫色,说明pH偏碱性,可加入少量3M醋酸钠(pH5。2),使溶解液变偏黄色,可提高回收效果)。将上述试管取出摇匀片刻,于最高速离心40s即可,去上清液,再取200µL Buffer DS将乳白色沉淀溶解,可在Vortex震荡,重复离心步骤得乳白色沉淀。取500µL已含乙醇的Washing Buffer加入试管来洗涤沉淀。Vortex震荡,溶解后即离心40s。将所得沉淀再次洗涤,将上清液吸净,放在通风橱中,加速控干过程。沉淀控干后加入20µL双蒸水或TE缓冲液,震荡溶解沉淀即可,离心,上清液即含回收DNA。 (责任编辑:qin) |