毕业论文移动版

CdCl2溶液：用超纯水配成10 mmol·L-1 的母液，现配现用，按所需浓度稀释。

Hoagland营养液：用超纯水配置大量元素Ⅰ、大量元素Ⅱ、微量元素、铁盐，按照4：4：2：1的比例每升溶液中加入大量元素Ⅰ10ml，大量元素Ⅱ10ml，微量元素5ml，铁盐2。5ml，在实验时将其稀释一半，即用1/2Hoagland溶液。

2。2 实验设计

将水稻种子浸入水中，去除漂浮在水面上的干瘪或坏的种子，挑选沉入水中饱满、无损害的种子。用超纯水冲洗数次后放在干净得培养皿里并用水浸泡，后将种子置于28℃温箱中保温，黑暗条件下浸种48h，每天换水，保证水分的干净清洁和充足的水量，萌发后，用镊子将露白一致的种子整齐摆放在纱网上，继续培养，但培养过程中既要保证水量的充足，又不宜水量过多浸没种子。

待幼苗长至一叶一心时，选择长势均一的幼苗用海绵松松包裹，后嵌入厚约1。5cm的打孔泡沫板中，再放入有1/2 Hoagland营养液的2L的塑料箱中，在28℃人工气候箱内进行培养，昼夜光照为14h/10h，湿度为70%。

幼苗适应生长一天后，进行4个处理，即CK、10umol/L CdCl2、75 umol/L CdCl2、200 umol/L CdCl2，每个处理3箱，即3个重复，每个重复54株，每2天换一次营养液，每次处理测量各项形态指标，处理10天后取样，进行各项生理指标的测定。文献综述

2。3 水稻表型和生物量测定

2。3。1 水稻表型测定

    更换营养液时，即每两天分别取各组幼苗10株，每个处理3个重复，作好标记，以后均测这10株，观察叶片形态、测定株高根长，并做好记录。

2。3。2 水稻生物量测定

随机取样后，用吸水纸吸干幼苗表面水分，用剪刀将地上部和地下部分开，分析天平称鲜重，并记录。将称完鲜重后的幼苗按标号放入对应报纸中，然后在105℃杀青15min后于75℃烘干至恒重，再称其干重，并记录，每个样本3个重复，每个重复10株。

2。4 水稻生理指标测定

2。4。1 丙二醛含量测定

称取各组叶片0。3g，加入10%TCA溶液2ml进行细致研磨，然后加入0。4ml10%TCA进行冲洗，转移至5ml离心管中，于12000r/min下离心10min，离心后取1。6ml上清和0。67%TBA以1：1比例均匀混合,置沸水中水浴30min，冷却至室温后再次离心，倒适量上清于比色皿中分别在450nm、532nm、600nm处进行比色。

MDA浓度C(umol/L)=6。45*（OD532-OD600）-0。56*OD450

可溶性糖含量（umol/L）=11。71*OD450

2。4。2 叶绿素含量测定

将80%丙酮和无水乙醇以1:1体积混匀作为浸提液，称取叶片0。3g，剪成1cm左右小段，放入塑料三角形小管中，外面再裹上报纸以避光，加入浸提液进行提取，一般放置一昼夜即24h即可倒出提取液，测量其体积，以浸提液作为对照，用分光光度计测其在645nm、663nm处的吸光值，计算叶绿素含量。来*自~优|尔^论:文+网www.youerw.com +QQ752018766*

Ca=12。7*A663-2。69* A645

Cb=22。9*A645-4。69*A663

总叶绿素浓度=Ca+Cb

叶绿素含量=(叶绿素浓度*提取液体积*稀释倍数)/样品重量

其中Ca和Cb表示叶绿素a和叶绿素b的浓度

2。4。3 可溶性蛋白含量测定

可溶性蛋白标准曲线制作：按照如下表格依次加入标准蛋白，超纯水，待其混合后，每管加考马斯亮蓝溶液5ml，充分混匀，静置5 min后测定OD595。