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基于SSR标记的小酸浆种质资源遗传多样性分析(6)

时间:2021-10-19 21:29来源:毕业论文
使用琼脂糖凝胶电泳的方法检测DNA的纯度和模板的完整性:取5ul 的DNA样品与2ul 6Loading Buffer进行混合,在1%-1。5%的琼脂糖、1TAE缓冲液和含溴化乙锭(EB)(

使用琼脂糖凝胶电泳的方法检测DNA的纯度和模板的完整性:取5ul 的DNA样品与2ul 6×Loading Buffer进行混合,在1%-1。5%的琼脂糖、1×TAE缓冲液和含溴化乙锭(EB)(0。5ug/ml)配置成的琼脂糖凝胶中进行电泳检测,并且使用紫外凝胶成像系统(Bio-RAD,Universal HOODⅡ)在电脑上进行拍照,观察条带清晰度和亮度以及点样孔的亮度,观察电泳条带有无严重的拖尾等现象来确定小酸浆样本DNA的纯净度和模板的完整性。

3。3 SSR-PCR扩增与引物的筛选

SSR-PCR扩增体系的配置:

1×体系

ddH2O 3μl

PrimerF 0。5μl

PrimerR 0。5μl

Mix 5μl

DNA 1μl

总计 10μl

注意体系配置完成后要滴加适量甘油,避免挥发。

SSR-PCR体系在Eppendorf AG 22331 Hamburg型PCR扩增仪上的扩增程序:扩增的参数为:94 ℃,5 min预变性;(94 ℃,45 s变性,根据不同引物相应的Tm退火值(一般为56℃)45 s复性,72 ℃,1。5 min延伸)统共35个循环;最终72 ℃延伸10 min,16 ℃恒温保存。

SSR引物的筛选:对扩增后的PCR产物进行电泳检测,以SSR标记的PCR扩增产物于220V电压下进行电泳,采用6%的聚丙烯酰胺凝胶垂直电泳进行检测,电泳时长约为50~90分钟。具体的操作过程如下所述:文献综述

(1)制作6%聚丙烯酰胺凝胶:

①清洗2对玻璃板、塑封玻璃条及2个胶槽,搭建灌胶模型并且用两对夹子固定,在胶槽内灌入加热后的1-1。5%的琼脂糖,静待3-5分钟等待其凝固,注意清洗后要对玻璃板用专门的吸水纸进行擦拭,以免面板太脏影响灌胶,另外也要注意夹子的松紧度和琼脂糖的凝固时间,以免影响到下一步实验的进行。

②制备两块量的6%聚丙烯酰胺凝胶溶液:

注意,制作前要事先查看所用溶液的量是否足够进行实验,如果不够则要进行配制,以免连贯性的实验被打断。此外,聚丙烯酰胺凝胶溶液凝固速度相对较快,所以要控制实验的时间尽量准确、迅速,以助于实验的正常进行。两块6%聚丙烯酰胺凝胶溶液的配方如下表:

试剂 体积

6%PAGE 50ml

TEMED 50μl

APS 500μl

③用加热磁力搅拌器(JKIKA WERKR,RCT basic)将制备好的溶液搅拌混匀,注意不要开启加热模式。搅拌30秒左右即可进行灌胶,灌胶时动作要迅速且连贯,防止气泡的产生。灌完胶后插上1mm规格的梳子,并检查用于固定玻璃板的夹子是否夹紧,确认无误后将整块玻璃板枕于泡沫板上,尽量放平,然后静待聚丙烯酰胺凝胶溶液凝固(一般所需时间为30至40分钟)即可。

 (2)垂直电泳:

等到聚丙烯酰胺凝胶凝固之后,出去底部的胶槽以及玻璃板夹缝中的琼脂糖凝胶胶条,将整块玻璃板移至电泳槽上(注意:放置时一定要排净两块玻璃板之间底部的气泡,否则,模板会跑得不整齐,从而影响观察),再用大号夹子夹紧玻璃板,在电泳槽中补足加上1 × TBE缓冲液,缓缓拔下1mm齿梳。来*自-优=尔,论:文+网www.youerw.com

吸取5μl 的PCR产物(因为Mix自带蓝颜色,所以产物不需要与6×Loading buffer进行混合)进行上样,根据地区不同,在每个地区模板的首尾点上聚丙烯酰胺凝胶专用Maker来标记片段大小;设置电泳仪电压为220V,待PCR产物跑至肉眼可见与胶板内水面齐平处(实际为胶板2/3处)结束电泳,时间约为1h左右,准备进行下一步银染。 基于SSR标记的小酸浆种质资源遗传多样性分析(6):http://www.youerw.com/shengwu/lunwen_83184.html

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