1.1.2项目采用的酵母及其培养条件
    酵母菌株XK-125是本项目的供试酵母(使用前利用甘油法保存于-70°C的环境中),接种酵母的培养基为YPD培养基(10 g 酵母粉;20 g 蛋白胨;20 g 葡萄糖;15g琼脂;1L蒸馏水),培养环境:30℃避光培养。构建荧光互补载体菌株所使用培养基为SD-Trp培养基(0.74 g Trp ;6.7 g酵母提取物;182.2 g山梨醇;20克琼脂;1L蒸馏水,调pH至5.8冷却至50℃添加40毫升50%葡萄糖。)

1.    2 方法
1.2.1 构建目的基因敲除载体
敲出载体的制备主要运用同源重组的原理,设计目的基因上下臂的特异性引物,利用PCR扩增技术扩增上下臂基因序列各约1 kb,紧接利用酶切连接的原理,用特定的限制性内切酶分别酶切上臂基因序列以及测序正确的pCX62载体质粒。经过T4连接酶的连接后转入到大肠杆菌感受态细胞中,最后提取已经验证具有氨苄抗性的菌落质粒。获得上述质粒后再运用同样的方法步骤连接下臂质粒,获得用于同源重组的pCX62置换载体后,送去测序公司测序,测序正确后用于转化。  

1.2.2 稻瘟病菌原生质体的转化
稻瘟病菌的原生质体转化主要是运用聚乙二醇(PEG)介导的方法,将敲出载体转化到野生型Guy11菌株中。
1.2.2.1 原生质体的制备:
(1) Guy11菌株的活化:无菌条件下,将菌落直径约2mm菌丝块接种于CM平板上培养7 d左右。
(2)超净台下,切取上述菌株直径大小约3 mm的菌落,放置于CM的液体培养基(100ml左右)中,在28°C、150 rpm的环境下振荡培养2 天;
(3)用单层滤纸过滤菌丝,用吸水纸将菌丝压干待下一步使用;
(4)配制破壁酶解液(0.3g几丁质酶、30ml 0.7mol/L NaCl,使用前用细菌过滤器过滤),将压干的菌丝放入酶解液中,在30℃ 60rpm的摇床里振荡酶解2h。
(6)用灭菌双层滤纸过滤酶解后的菌丝体,留上清液,将滤液收集于50 ml离心EP管中;
(7) 在4°C水平离心机中低温离心10min,转速3000 rpm;
(8) 在弃上清后,先加1mlSTC,用剪过的枪头吹打悬浮原生质体,再加STC至15ml后,在4°C离心机里3000 rpm离心10 min;
(9) 再次重复步骤(8);
(10) 加适量的STC吸打悬浮,在显微镜下镜检计数,根据原生质体数目来确定浓度(一般为10^8个/ml),最后分装150 µl/管。
(11)加1mlPTC后上下颠倒混匀,静止30min后加入含1%氨苄的TB3液体培养基6-8ml,扩培2h;
(12)在200mlTB3培养基里加300ul潮霉素,将扩培后的原生质体加入培养基中后倒板,10ml/板,吹干后倒第二层培养基(200mlTB3中加600ul潮霉素)。
(12)在28℃温箱中培养7天。
1.2.2.2获得转化子
(1)培养3天后,挑取菌落中的菌丝接种于含3ul/ml潮霉素抗性的TB3培养基中,28℃培养7天后进行转化子的筛选。
1.2.2.3转化子的提取及验证
用灭菌过用于稻瘟病的牙签挑取大小约为2cm×2cm的菌块用于基因组粗提。利用CTAB提取基因组的方法获得转化子的基因组DNA。设计基因组的臂内引物,每个转化子基因组DNA为模板进行PCR扩增。利用野生型Guy11的基因组作为阳性对照,如果能够扩增出特异性目的条带的转化子,则为为敲掉失败或者是异位整合的转化子,对于不能够扩增出目的条带的转化子,再利用臂外引物进行进一步的PCR验证。如果可以扩增出1.5Kb的目的条带,就筛选到敲除突变体。
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