3。2 水解用酶筛选实验  21 

3。3 超声波辅助酶法与传统酶法的酶解效果比较 。。 22 

3。4 超声波辅助酶法制备大豆降血糖肽单因素试验  23 

3。4。1 超声处理时间的影响  23 

3。4。2 超声波功率的影响 。。 23 

3。4。3 超声波预处理底物料液比的影响 。。 24 

3。4。4 酶解时间的影响 。 25 

3。4。5 酶解加酶量的影响 。。 26 

3。4。6 酶解底物浓度的影响  26 

3。5 响应面法分析大豆降血糖肽的最佳制备工艺 。。 27 

3。5。1 酶解响应面因素的确定 。 27 

3。5。2 超声波响应面(RSM)因素的确定  28 

3。5。3 响应面试验结果方差分析 。。 28 

3。5。4 响应曲面分析  31 

3。6 荧光光谱分析 。 33 

3。7 傅里叶变换红外光谱分析  37 

3。7。1 超声预处理过程 FTIR 分析 。 38 

3。7。2 酶解过程 FTIR 分析 。 39 

3。8 近红外拉曼光谱分析 。 40 

3。8。1 超声预处理过程的近红外拉曼分析  41 

3。8。2 酶解过程近红外拉曼分析 。。 43 

3。9 超滤分离大豆降血糖肽 。。 43 

3。10 732 型阳离子交换树脂分离大豆降血糖肽  44 

3。10。1 732 型阳离子交换树脂静态吸附试验  44 

3。10。2 732 型阳离子交换树脂解吸试验 。 44 

3。10。3 732 型阳离子交换树脂的分离结果 。。 45 

3。11 Sephadex G-25 葡聚糖凝胶分离纯化大豆降血糖肽结果  46 

3。12 反相高效液相色谱质谱联用分析大豆降血糖肽 。。 47 

3。13 四氧嘧啶型糖尿病小鼠降血糖实验结果 。。 51 

3。13。1 糖尿病小鼠模型建立结果 。 51 

3。13。2 大豆降血糖肽对糖尿病小鼠体重的影响 。 52 

3。13。3 大豆降血糖肽对糖尿病小鼠饮水量的影响 。。 53 

3。13。4 大豆降血糖肽对糖尿病小鼠采食量的影响 。。 54 

3。13。5 大豆降血糖肽对糖尿病小鼠餐后血糖的影响  55 

结      论 。 57 

致      谢 。 58 

参考文献 。。 59 

第1章  绪论 

1。1 糖尿病概述 

1。1。1 糖尿病定义 

糖尿病（DM）是一种由于体内胰岛素分泌不足而引起的以糖、脂、蛋白质和继 发性的维生素、水、电解质代谢紊乱，以及氧化平衡破坏的一种慢性终身性的全身代 谢性疾病[1]。糖尿病的发病主要是两个原因：①胰岛素分泌不足；②外周效应细胞对 胰岛素不敏感。当胰岛素水平偏低或者产生胰岛素抗性时，会防碍机体将葡萄糖合成 为糖原(主要在肝脏)，而最终导致多余的血糖无法被转化。其主要特点是高血糖及糖 尿。

作为一种多发性的内分泌代谢病，糖尿病的发病率日渐升高，已成为世界性的常 见病、多发病，并且具有扩大化和年轻化的倾向，是仅次于肿瘤和心血管疾病的第三 大疾病。糖尿病又常伴随着各种各样的急、慢性并发症，严重威胁着患者生命及生活 质量。2012 年的全球前十的死亡原因统计数据显示，糖尿病成为第八位主要死亡原 因， 死亡人数由 2000 的 100 万/年增长到 2012 年 150 万/年，上升的趋势十分明显

[2]。因此，开发新型治疗糖尿病途径及药物的任务非常紧迫，具有十分重要的现实意

义。

1。1。2   糖尿病分类